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蛋白抑菌活性測試是評估某種蛋白質(zhì)(如抗菌肽、溶菌酶、防御素、重組蛋白、抗體等)是否具有抑制或殺滅細(xì)菌能力的實(shí)驗(yàn)。該測試廣泛應(yīng)用于新抗菌藥物開發(fā)、免疫學(xué)研究、食品保鮮、生物材料等領(lǐng)域。
一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/b>
判斷目標(biāo)蛋白是否具有抑菌或殺菌作用;
測定其z小抑菌濃度(MIC)和z小殺菌濃度(MBC);
比較不同蛋白或處理?xiàng)l件下的抗菌效力;
研究作用機(jī)制(如破壞細(xì)胞膜、抑制蛋白合成等)。
二、常用抑菌活性檢測方法
方法 1:瓊脂擴(kuò)散法(Agar Diffusion Assay)——定性/半定量
適用:液體或固體蛋白樣品(如純化蛋白、粗提物)
原理:
將蛋白樣品加入瓊脂孔中,擴(kuò)散后觀察是否形成抑菌圈。
操作步驟:
將對數(shù)期生長的指示菌(如大腸桿菌 E. coli、金黃色葡萄球菌 S. aureus)用無菌生理鹽水調(diào)整至 ~10? CFU/mL;
取100 μL菌液與4–5 mL溫融的LB瓊脂(約45℃)混合,迅速倒入平皿,制成雙層瓊脂平板;
凝固后,用無菌打孔器打孔(直徑6–8 mm),或放置牛津杯;
向孔中加入 50–100 μL 蛋白樣品(不同濃度);
37℃ 培養(yǎng) 16–24 小時(shí);
測量抑菌圈直徑(含孔徑),判斷活性。
結(jié)果判定:
抑菌圈直徑 > 8–10 mm:有抑菌活性
越大表示活性越強(qiáng)
可設(shè)置陽性對照(如氨芐青霉素)和陰性對照(緩沖液)
注意:蛋白在瓊脂中擴(kuò)散能力受分子量影響,大分子蛋白擴(kuò)散慢,抑菌圈可能較小。
方法 2:液體稀釋法(Broth Dilution Assay)——定量(推薦)
目的:測定z小抑菌濃度(Minimum Inhibitory Concentration, MIC)
原理:
在液體培養(yǎng)基中對蛋白進(jìn)行倍比稀釋,加入細(xì)菌,觀察是否抑制生長。
操作步驟(96孔板法):
在96孔板中,用LB或MHB培養(yǎng)基對蛋白進(jìn)行倍比稀釋(如 256 → 128 → 64 → ... → 0 μg/mL);
每孔加入菌液,使終濃度為 ~10? CFU/mL;
設(shè):
陰性對照:菌 + 培養(yǎng)基(應(yīng)生長)
陽性對照:菌 + 抗生素(應(yīng)無生長)
樣品對照:蛋白 + 培養(yǎng)基(無菌,排除污染)
37℃ 靜置培養(yǎng) 16–24 小時(shí);
觀察各孔是否渾濁(細(xì)菌生長);
完全無渾濁的z低蛋白濃度即為 MIC。
方法 3:z小殺菌濃度(Minimum Bactericidal Concentration, MBC)
目的:判斷蛋白是抑菌還是殺菌
操作:
取 MIC 及以上濃度的無菌生長孔,取100 μL涂布于LB平板;
37℃ 培養(yǎng) 24 小時(shí);
統(tǒng)計(jì)菌落數(shù);
殺死 ≥99.9% 細(xì)菌的z低濃度為 MBC。
判斷標(biāo)準(zhǔn):
若 MBC ≤ 4×MIC:認(rèn)為是殺菌劑(bactericidal)
若 MBC > 4×MIC:認(rèn)為是抑菌劑(bacteriostatic)
方法 4:時(shí)間-殺菌曲線(Time-kill Assay)
目的:動態(tài)觀察蛋白的殺菌動力學(xué)
操作:
將細(xì)菌與不同濃度蛋白(如 MIC、2×MIC、4×MIC)共孵育;
在不同時(shí)間點(diǎn)(0、1、2、4、6、8、24 h)取樣;
梯度稀釋后涂板;
培養(yǎng)后計(jì)數(shù)菌落(CFU/mL);
繪制“時(shí)間-活菌數(shù)”曲線。
結(jié)果:
曲線快速下降 → 殺菌作用強(qiáng)
曲線平臺期 → 抑菌作用
方法 5:細(xì)胞膜通透性檢測(機(jī)制研究)
原理:
許多抗菌蛋白通過破壞細(xì)胞膜起作用。
常用方法:
SYTOX Green 染色:該染料不能穿透完整膜,但可進(jìn)入膜破損細(xì)胞并發(fā)光;
用熒光酶標(biāo)儀檢測熒光增強(qiáng),反映膜通透性變化;
掃描電鏡(SEM)或透射電鏡(TEM):觀察細(xì)胞形態(tài)損傷;
β-半乳糖苷酶釋放實(shí)驗(yàn):檢測細(xì)胞內(nèi)酶泄漏。
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